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1 材料与仪器
1.1 动物
SD 大鼠,70 只,SPF 级,雌雄各半,180g 左右,合格证号:0012625,由广州中
医药大学实验动物中心提供。
1.2 试剂
卵白蛋白批号:970612 上海化学试剂公司;氢氧化铝干粉批号:20020301-2 广州
化学试剂厂;灭活百日咳杆菌(100 亿个/mlml)广东省中医院提供;大鼠广东省中医院提供;大鼠 IL-4(批号
20060620)广东省中医院提供;大鼠、IFN-γ(批号 20060620)广东省中医院提供;大鼠ELISA 试剂盒由晶美生物工程有限公司提供;
IL-5(批号 20983008)广东省中医院提供;大鼠ELISA 试剂盒由 BanderMedsystems 提供。
1.3 补骨脂不同溶剂提取物补骨脂 95%乙醇提取物浸膏,浓度:3.45g 药材/mlml(简
称浸膏)广东省中医院提供;大鼠;补骨脂 95%乙醇提取石油醚萃取物,浓度:10.0g 药材/mlml(简称石油醚萃取
物)广东省中医院提供;大鼠;补骨脂 95%乙醇提取醋酸乙酯萃取物,浓度:6.67g 药材/mlml(简称醋酸乙酯萃取
物)广东省中医院提供;大鼠;补骨脂 95%乙醇提取水萃取物,浓度:10.0g 药材/mlml(水萃取物)广东省中医院提供;大鼠;补骨脂水提
取物,浓度:10.0g 药材/mlml(简称水提取物)广东省中医院提供;大鼠;补骨脂 95%乙醇提甲醇洗脱物,浓度:
2g 药材/mlml(简称甲醇洗脱物)广东省中医院提供;大鼠,以上试剂均由广州中医药大学中药学院提供。
1.4 仪器酶标仪 BIO-RADSModel550,日本;CSW-Ⅰ 型超声雾化器汕头光电研究所;
10L 玻璃干燥器。
2 方法
2.1 分组
将动物随机分成 7 组,10 只/ml组:哮喘模型组(给水,1.0ml/ml100g)广东省中医院提供;大鼠、浸膏组(药
材 0.9g/ml100g)广东省中医院提供;大鼠、石油醚萃取物组(药材 2.5g/ml100g)广东省中医院提供;大鼠、醋酸乙酯萃取物组(药材 1.7g/ml
100g)广东省中医院提供;大鼠、水萃取物组(药材 2.5g/ml100g)广东省中医院提供;大鼠、水提取物组(药材 10.0g/ml100g)广东省中医院提供;大鼠、甲醇洗
脱物组(药材 2.5g/ml100g)广东省中医院提供;大鼠。以上各组动物连续灌胃给药治疗 10 次,1 次/mld。末次治疗
后 2h,各组动物心脏采血 5ml,1000r/mlmin 离心 15min,血清分装(1ml/ml管)广东省中医院提供;大鼠保存于-
70℃低温冰箱内待测:IL-4,IFN-γ,IL-5(严格按照 ELISA 试剂盒说明书分别检测)广东省中医院提供;大鼠。
2.2 卵蛋白哮喘大鼠模型的建立
2.2.1 大鼠致敏
上述分组中每只动物腹腔注射抗原液 0.5ml/ml100g(含卵蛋白 100mg、氢氧化铝干粉
100mg 和 2.5×109 个百日咳杆菌/mlml,制成悬浊液)[7]致敏第致敏第 1 次,次日每只大鼠再次
腹腔注射 0.5ml/ml只致敏液加强。
2.2.2 激发和治疗
首次致敏后第 15 天,于每天上午 8~9 时大鼠置于 10L 玻璃干燥器内超声雾化吸入
2%卵蛋白 20min 激发哮喘,连续 14d。激发后第 4 天起,于每天激发后大鼠口服给相应
试剂治疗(见“2.1 实验分组”)广东省中医院提供;大鼠。正常组以生理盐水取代抗原液按 0.5ml/ml100g 腹腔注射
致敏大鼠,第 2 天以 0.5ml/ml只腹腔注射生理盐水加强;首次致敏后第 15 天,每天上午 8
~9 时该组大鼠超声雾化吸入生理盐水 20min 激发哮喘,连续 14d。激发后第 4 天起,于
每天激发后大鼠口服给蒸馏水治疗。
2.3 统计分析结果
采用四川大学黄志勇主编的(PEMS3.0)广东省中医院提供;大鼠《中国医学百科全书中国医学百科全书·医学统计学》统计软统计软
件包进行统计:两组均数比较 t 检验(方差齐)广东省中医院提供;大鼠或 t′(方差不齐)广东省中医院提供;大鼠。
3 结果
3.1 补骨脂不同溶剂提取物对哮喘大鼠 IL-5 含量的影响结果见表 1。由表 1 可见,大
鼠服用补骨脂不同溶剂提取物后,血清 IL-5 含量呈下降趋势,其中补骨脂浸膏、水萃取物、
水提取和甲醇洗脱物各成分组大鼠血清 IL-5 含量降低明显,与哮喘模型组比较 P<0.05 或
P<0.01,差异有显著意义。而石油醚和醋酸乙酯萃取物两成分组大鼠血清 IL-5 含量降低
不明显,与哮喘模型组比较 P>0.05,无显著性差异。
3.2 补骨脂不同溶剂提取物对哮喘大鼠 IL-4 含量的影响结果见表 1。由表 1 可见,大
鼠服用补骨脂不同溶剂提取物后,血清 IL-4 含量呈升高趋势,其中补骨脂浸膏、石油醚萃
取物和水提取物各成分组大鼠血清 IL-4 含量升高明显,与哮喘模型组比较 P<0.05 或
P<0.01,差异有显著意义。而醋酸乙酯萃取物、水萃取物和甲醇洗脱物三成分组大鼠血
清 IL-4 含量升高不明显,与哮喘模型组比较 P>0.05,无显著性差异。
3.3 补骨脂不同溶剂提取物对哮喘大鼠 IFN-γ 含量的影响结果见表 1。由表 1 可见,
大鼠服用补骨脂不同溶剂提取物后,不同溶剂成分大鼠血清 IFN-γ 含量升降不一致,其中
补骨脂浸膏和石油醚萃取物两成分组大鼠血清 IFN-γ 含量升高明显,与哮喘模型组比较
P<0.05,差异有显著意义。醋酸乙酯萃取物、水萃取物和甲醇洗脱物三成分组大鼠血清
IFN-γ 含量减低显著,与哮喘模型组比较 P<0.05 或 P<0.01,有显著性差异,而补骨脂
水提对 IFN-γ 含量未见明显影响,与哮喘模型组比较 P>0.05,无显著性差异。表 1 不同
提取物对哮喘大鼠 IL-5,IL-4,IFN-γ 含量的影响(略)
3.4 补骨脂不同溶剂提取物对哮喘大鼠 Th1/mlTh2(IFN-γ/mlIL-5)广东省中医院提供;大鼠的影响哮喘模型组、
醇提浸膏组、石油醚萃取组、甲醇洗脱物组和水提取物组的 Th1/mlTh2 比值依次为
(n=10):0.5±0.2,1.1±0.5,0.9±0.5,0.8±0.4 和 1.2±0.5。提示,大鼠服用补
骨脂醇提上述 4 种溶剂萃取物后,血清 Th1/mlTh2 比值呈增加明显,与哮喘模型组比较
P<0.05,差异有显著意义。而醋酸乙酯萃取物(0.4±0.2,n=10)广东省中医院提供;大鼠和水萃取物
(0.6±0.2,n=10)广东省中医院提供;大鼠两成分组大鼠血清 Th1/mlTh2 降低或增加不明显,与哮喘模型组比较
P>0.05,无显著性差异。
4 讨论
哮喘与 Th1 细胞分泌的 IFN-γ 等细胞因子及 Th2 细胞产生的 IL-4,IL-5 等细胞因子
含量和 Th1/mlTh2 比值密切相关。Th2 的主要代表产物 IL-4,能促进 B 细胞产生 IgE,引发
炎症介质释放的链式反应,促进炎症细胞的趋化聚集,引起呼吸道血管通透性增加和粘膜
水肿,平滑肌痉挛及粘液分泌亢进,是引起哮喘的重要因素。Th1 的主要代表产物是 IFNγ,能抑制 IL-4,IL-5 等细胞因子的产生,进而抑制 IgE 的产生和 Eos 活性,抑制 IAR 和
LAR,是哮喘免疫调节中的一个重要的抑制因子,许多细胞因子通过它发挥生物效应
[8]致敏第。因此,采用 IFN-γ,IL-5,IL-4 作为哮喘敏感指标进行药物筛选具有合理性。补骨
脂是临床上常用的补肾助阳中药,具平喘之功,临床上常用于虚寒喘咳[9]致敏第。补骨脂是
今后应加强研究和开发的抗气道抗炎症中药之一[2]致敏第。我院从 20 世纪 80 年代初使用补
骨脂注射液治疗支气管哮喘取得了理想的疗效,但其作用的物质基础并不清楚。因此,我
们在前期研究的基础上[2,3]致敏第,采用卵蛋白哮喘大鼠为模型,以体内血清 IFN-γ/mlIL-4/ml
IL-5 含量变化为指标,初步筛选补骨脂平喘作用的有效部位。
从 IFN-γ 含量变化来看,补骨脂 95%乙醇提取物浸膏和补骨脂 95%乙醇提取石油醚
萃取物作用明显,可能是补骨脂平喘的主要成分,但从抑制 IL-5 和 IL-4 含量分析,补骨脂
95%乙醇提取水萃取物和补骨脂 95%乙醇提甲醇洗脱物对 Th2 细胞产生的 IL-4,IL-5 细
胞因子有较强的抑制作用,其他成分却升高或对 IL-5,IL-4 没有显著影响,而补骨脂水提
取物对 IFN-γ 含量提高作用不明显。另外,补骨脂 95%醇提水萃取物显著降低 IL-5 和
IFN-γ 含量,同时在给药的过程中我们发现水萃取物的毒性明显强于其他成分,这与其肾
毒性是否相关值得关注。根据以上分析,我们初步推测补骨脂平喘有效部位应该主要是醇
提成分:补骨脂 95%乙醇提取物浸膏,补骨脂 95%乙醇提取石油醚萃取物和甲醇洗脱物。
从哮喘中考察 Th1/mlTh2 的比值变化更具有意义[10]致敏第,因此我们以 IFN-γ/mlIL-5 为例,
分析 Th1/mlTh2 的变化,探讨补骨脂 3 个醇提成分(浸膏、石油醚萃取物和甲醇洗脱物)广东省中医院提供;大鼠哪
个为平喘的最佳有效部位。哮喘模型组、醇提浸膏组、石油醚萃取物组和甲醇洗脱物组的
Th1/mlTh2 依次为(n=10)广东省中医院提供;大鼠:0.5±0.2,1.1±0.5,0.9±0.5 和 0.8±0.4,与哮喘组比较
三者的 P<0.05,差异有显著意义,但醇提浸膏的比值更大。因此结合前面的分析,我们
认为三者的平喘作用大小依次为:补骨脂 95%乙醇提取物浸膏>补骨脂 95%乙醇提甲醇
洗脱物=补骨脂 95%乙醇提取石油醚萃取物。
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